SDS-PAGE电泳条带跑偏了,相邻蛋白条带跑在一起了,什么原因造成的? 1.5万 1 0:56 App 为什么SDS-PAGE电泳前要煮蛋白呢? 3835 1 4:15 App Western Blot实验指南(001-SDS-PAGE) 2838 -- 1:11 App SDS-PAGE电泳分辨率不高,有什么办法可以优化? 5174 1 0:51 App SDS-PAGE电泳凝胶的浓度大小对蛋白迁移...
Quantifying bands on SDS-PAGE using ImageJ ImageJ软件处理SDS PAGE条带方法kiyamaharuo 立即播放 打开App,流畅又高清100+个相关视频 更多47.5万 371 2:33 App 把一只大蜘蛛和200只蚂蚁关一起!会发生什么事? 27.2万 565 2:32 App 把一只豆青虫扔进漂白水!会发生什么事? 2684 -- 22:59 App 听风的蚕:...
降低电压,提供低温跑电泳环境,比如冷室,或者冰水浴,配胶的时候要混匀! 我用80V的电压跑了浓缩胶与分离胶,分离胶改为7.5%,发现条带还没有完全分离开来的时候就跑到底了,比如marker有7条带,只跑出来5条,样品蛋白条带也明显下移,是不是由于分离胶电压太小的原因, 18 1 2 3 ››...
我是将七个基因片段重组到pET32a质粒上,后在BL21里用IPTG诱导表达,可跑出的条带为什么有3个明显不对呢? 如图所示,三个样品的诱导前(是在加入IPTG诱导前吸取的1ml重组质粒)和诱导后从左至右长度分别为972bp,999bp,1194bp,不算空载的大小,理应是35.64kD/36.63kD/43.78kD, 四个样品的诱导前(是在加入IPTG诱导...
1、免疫球蛋白可能过度表达，导致分子量大于正常。2、免疫球蛋白可能有多个亚基结构，导致分子量偏大。3、免疫球蛋白的抗原可能太小，导致分子量偏大。sdspage是聚丙烯酰胺凝胶电泳，PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）是以聚丙烯酰胺凝胶作为支持介质的一种常用电泳技术，用于分离蛋白质和寡核苷酸。
如果你在预期的GST标签蛋白条带下方看到更小的条带,那可能意味着你的蛋白质在纯化或储存过程中发生了降解。 百泰派克生物科技--生物制品表征,多组学生物质谱检测优质服务商 相关服务: SDS-PAGE蛋白质纯度分析 蛋白质纯度和均一性表征 蛋白质纯度分析(分子筛/反相色谱) ...
在SDS-PAGE中有时会遇到各种各样的问题,不妨来看看该如何解决吧。问题一:微弱或缺失的蛋白条带可能的原因1:加样量低于染色剂的检测水平,样品分子量太小——小肽(小于4kda)解决方法:检查A280并增加样品浓度使用更敏感的染色剂(例如银染)可能的原因2:蛋白质没有固定在凝...
原核表达时跑SDS-PAGE电泳,条带应该是多大,是和自己的目的基因蛋白的分子量一样,还是得加上标签蛋白的分子量? 相关知识点: 试题来源: 解析 目的蛋白加上标签蛋白的总分子量,当然会有误差.像GST这种标签很大的,有30kd左右.而FLAG,HIS等都比较小.结果一 题目 原核表达时跑完电泳,条带应该是多大,是和自己的...
SDS-PAGE是一种用于分离和分析蛋白质的技术，其原理是基于蛋白质分子量的差异。在电泳过程中，蛋白质会根据其分子量大小被分离成不同的带。因此，即使蛋白质之间存在相互作用，它们在经过SDS-PAGE处理后仍会被分开。值得注意的是，如果两种蛋白质的分子量非常接近，且聚丙烯酰胺凝胶的分辨率足够高，那么...
染色后，还需要脱色液（有乙醇、醋酸）脱色，不脱色的话全是蓝色，不能区分条带。脱色后，条带才能显示出来。在跑SDS-PAGE时，需要点Marker，正常情况在染色、脱色后能至少看到Marker的条带。如果Marker都没有，那就是电泳问题了。蛋白浓度不够、跑胶的时间过长或过短、仪器问题、正负极不要插反。