sds电泳脱色技巧 SDS-PAGE电泳染色脱色时间较长,如果急于看结果,可以采用以下方法: 1.将胶转移到适当大小的玻璃平皿中,倒入考马斯亮蓝染色液,液面能覆盖胶面即可,然后用另一平皿盖住表面,放入微波炉中加热,一见沸腾,立即停止,然后放在摇床上摇5分钟左右即可,这样的染色效果很好。 2.脱色也可采取相同的方法,只...
1、染色不足或脱色过度 如果染色时间过短或脱色过度条带可能无法显现出来。常见的染色剂是考马斯亮蓝或...
SDS-PAGE快速染色脱色方法 在用SDS-凝胶电泳法测定蛋白质分子量时，应注意以下几个问题：1．如果蛋白质-SDS复合物不能达到1.4克SDS/1克蛋白质的比率并具有相同的构象，就不能得到准确的结果。影响蛋白质和SDS结合的因素主要有以下3个：（1）二硫键是否完全被还原：只有在蛋白质分子内的二硫键被彻底还原的情况...
考马斯亮蓝染色液:称取1g考马斯亮蓝R-250溶于400mLddH2O中,加入450mL甲醇,100mL冰醋酸,最后加ddH2O定容至1L。 脱色液:甲醇100mL,冰醋酸100mL,ddH2O定容至1L。 实验流程: 1. 制胶:根据目的蛋白分子量大小选择合适的PAGE分离胶配制浓度。 SDS-PAGE分离胶浓度 最佳分离范围 6% 50-150kD 8% 30-90kD 10%...
染色后，还需要脱色液（有乙醇、醋酸）脱色，不脱色的话全是蓝色，不能区分条带。脱色后，条带才能显示出来。在跑SDS-PAGE时，需要点Marker，正常情况在染色、脱色后能至少看到Marker的条带。如果Marker都没有，那就是电泳问题了。蛋白浓度不够、跑胶的时间过长或过短、仪器问题、正负极不要插反。
在进行SDS-PAGE电泳时，我们通常会在凝胶上点入蛋白质分子量Marker。在正常的情况下，经过染色和脱色处理后，我们至少应该能够看到Marker的条带。如果连Marker的条带都无法看到，那么问题很可能出现在电泳过程中。这可能是由于蛋白浓度不足、电泳时间不当（过长或过短）、仪器出现故障，或者正负极接反等...
SDS-PAGE的染色剂和洗脱剂是什么 相关知识点: 试题来源: 解析 考马斯亮蓝 R250染液:1L=1g考马斯亮蓝 R250+水650ml+异丙醇250ml+冰醋酸100ml 脱色液:1L=水850ml+乙醇50ml+冰醋酸100ml 分析总结。 1l1g考马斯亮蓝r250水650ml异丙醇250ml冰醋酸100ml...
在时间里徘徊_天下三翼徘徊时间,穿越之我舞月徘徊1-40,sds-page脱色时间 热度: 页数:3 (精品)SDS-PAGE凝胶蛋白质考马斯亮蓝染色液(整理) 热度: 页数:1 SDS-PAGE电泳、western blotting 过程中常见问题以及解决方法 热度: 页数:28 用于微生物染色后的脱色判定方法 热度: 页数:9 染色废水电解气浮...
SDS-PAGE是一种常用的蛋白质分析方法,可以按照分子量大小对蛋白质进行分离.如果在电泳后没有观察到条带,可能是样品处理、电泳条件、染色/脱色或凝胶制备等方面存在问题.
背景:给染色结束的SDS-PAGE胶脱色往往需要比较长的时间,否则会由于脱色不完全而导致条带不清晰,影响到拍照的效果。 方法改进:改进的方法很简单易行——取一张我们常常随身携带的面巾纸,打个结放入盛有脱色液的大培养皿里放到脱色摇床上,这样一来,原来过夜脱色达到的效果现在只需要短短的3、4个小时就可以轻松实现...