当然电压太低,等待电泳结果的时间就会延长,一般控制电泳电压≤5V/cm,可保证电泳条带的清晰度。 (七)电泳条带异常亮、边缘不清晰是为什么? 可能的原因:1.点样质粒浓度过高或者加样量过高;2.软件曝光度过高 (八)条带看起来不清晰、条带未分离是为什么? 可能的原因:1.软件焦距没调好;2.凝胶浓度影响:长片段的...
其电泳迁移速率会比对照组原始质粒的超螺旋结构速度慢，可以检验质粒是否被切开。
本次实验中,我们利用XbaI酶来切割目标质粒,并进行电泳分析,得到了以下结果: 首先看电泳图,我们可以看到样品1和样品2中出现了两个明显的条带,而对照组中只有一个条带,这说明目标质粒在切割后被分成了两个不同的片段,而对照组则只有一个包含完整目标序列的片段。 接下来,我们需要确定这些片段的大小。根据参照标准...
Marker保持稳定，建议延长电泳时间或选择更小分子量的Marker，以降低人为判断的偏差。由于缺少上样量、阳性对照及Marker的具体信息，无法进行精确的定量分析，但从电泳图的亮度来看，DNA的量显然较为丰富。若lane4、lane5、lane6代表的是不同浓度的梯度样品，则表明DNA的纯度达到了非常高的水平。Marker位置...
2,不告诉大家你用的marker,分子量试不好说的,更何况,你没酶切过,用质粒与线性的Marker比较没有任何意义。纯度也没什么大问题,质粒提取出现3条是最正常的,4条带表明有基因组DNA污染,但你的这个带很弱,问题不大;稍有疑问的是,你主带的下方还有1,2条更小的带,如果排除电泳污染的话,应该是不同程度的超螺旋...
在进行质粒DNA提取及电泳分析实验时，如果提取量为1ul或2ul，通常情况下，质粒的提取浓度应该在200ng/ul或更高。具体浓度取决于你点样的数量。没有透露你所使用的marker类型，因此无法准确评估分子量。更关键的是，因为你没有进行酶切，所以用质粒与线性Marker进行比较没有实际意义。从纯度来看，质粒提取...
质粒电泳图那个除了很亮的那个是质粒,上面细细的那带应该是基因组的;PCR结果比较差,基本上是没跑好了,再优化体系和问题跑跑看吧。
首先，Marker没有跑开，可以适当延长一下电泳时间或者考虑换一个更小分子量的Marker，以减少人为判断的...
质粒呈线性时，电泳位置大概在2500bp左右，如果质粒提取的好，那提取出来的质粒会是超螺旋。超螺旋在电泳中跑得快，会在2500bp前面，所以看上去会是比较小的条带。而提取过程不好的话，在超螺旋后面会有两条带，一条为开环质粒（2500bp左右），一条为复制中间体（>2500bp）酶切后，因为EcoRⅠ只有...