骨硬组织切片染色的步骤是固定、脱水、染色、透明以及封片。骨硬组织切片是为了观察骨组织的结构和病理变化的一种技术,在生物学和医学研究中被广泛应用。 1.固定:被切下的骨硬组织样本需要立刻使用乙醇或甲醇等固定剂进行固定,可以使骨硬组织尽可能的保持原本结构,防止骨硬组织分解。 2.脱水:需要将固定好的骨硬组...
组织切片染色的步骤通常包括以下几个阶段: 取材:从生物体中取出需要研究的组织结构。 固定:使用适当的固定液将组织固定,以保持其结构稳定。 脱水:通过不同浓度的乙醇溶液对组织进行逐级脱水。 透明:将脱水后的组织依次浸泡于二甲苯中,使其变得透明。 浸蜡:将透明的组织依次浸泡于石蜡中。 包埋:将液态的石蜡倒入模具...
1. 对切片进行脱蜡复水。 2. 将切片在新制备的氧化溶液中孵化10分钟。 3. 用自来水简单冲洗切片,然后用蒸馏水浸泡一次切片。 4. 将切片在2%草酸溶液孵育10分钟或直到透明。 注意:在此步骤之后,切片应该是无色的。 5. 用自来水简单冲洗切片,然后用蒸馏水浸泡2...
1. 可选步骤:对切片进行脱蜡至水 2. 在组织切片中加入足够量的龙胆紫溶液将其完全覆盖并孵化1分钟。 3. 用蒸馏水冲洗切片以去除多余的染色剂。 4. 使用足量的鲁戈氏碘液将组织切片完全覆盖,并孵育1分钟。 5. 轻柔水洗切片,以去除多余的碘液。 6. 将切片置入...
在进行组织切片染色的过程中,需要按照一定的步骤来进行操作,以确保获取到清晰、准确的结果。 一、制备组织样本 在进行组织切片染色之前,首先要制备好组织样本。通常需要从动植物的组织中取材,比如叶片、根茎、器官等。在取材的过程中要保持组织的完整性,避免损伤。取得样本后,可以进行固定处理,比如用福尔马林、乙酸乙酯...
HE染色实验步骤 1.苏木素比水1:4稀释，摇晃均匀 2.把载玻片上的水擦干净 3.把混合好的苏木素滴到组织上一分钟后用纯水冲洗 4.自来水浸泡一会反蓝 5.伊红染色1分钟，根据染色情况，可以适当增加或减少染色时间，流水冲洗 6.70%、80%、90%、100%酒精各10秒，观察显色情况 7.显微镜下观察，颜色均匀，显色...
组织切片茜素红染色步骤 1、切片准备:首先,将组织切片切成适当厚度(通常为4-5微米),并将它们贴在载玻片上。接着,将载玻片放入60°C烤箱中烘烤大约30分钟,以便石蜡能够更好地附着到切片上。 2、去石蜡和水化:在水化过程中,切片会在二甲苯中经过两次处理,每次5分钟,以去除石蜡。随后,通过一系列浓度递减的酒精(...
组织冰冻切片染色步骤 (1)切片后固定,固定时间为30s-1min,清水稍冲洗1-2s。 (2)玻片浸没于含苏木素的染缸中,时间大概为3-5min;然后清水洗去苏木素,大概5-10s。 (3)再把玻片浸没于1%盐酸乙醇2s;然后清水冲洗1-2s。这个时候在显微镜下观察,细胞核呈紫蓝色,细胞浆无色说明操作无误。
1️⃣ 首先,将脑组织切成40微米的OCT冰冻切片,每片放置在24孔板中,每个个体切3-4片。2️⃣ 在24孔板中加入多聚甲醛固定液,室温固定20分钟。3️⃣ 使用PBS清洗两次,每次10分钟(注意不要使用吸引泵吸走废液,以免将组织吸走)。4️⃣ 配制2% tritonX-100-10% donkey serum的PBS溶液,室温通透和封闭...
免疫荧光染色 2. 步骤 1. 固定组织标本并制备切片。 2. 对切片进行去蜡及水化处理。 3. 封闭非特异性结合位点,避免后续染色的背景干扰。 4. 加入一抗与切片孵育,之后换液进行清洗。 5. 加入二抗并通过化学发光或显色剂显色。 3. 应用 免疫组化法在肿瘤分型、免疫反应和胚胎发育研究等方面得到了广泛应用,...