用PMA孵育THP-1细胞48h，显示THP-1(40X)在(A)诱导前(B)诱导后的形态学变化。它们的形态由圆形变为细长和扁平。巨噬细胞进一步诱导成M1型实验步骤：（1）诱导培养基的配置：向1640完全培养基（含胎牛血清）里加入PMA（诱导浓度：100ng/mL）、脂多糖(LPS)(诱导浓度：100ng/mL)(abs47014848)、IFN-γ(诱导浓...
用PMA孵育THP-1细胞48h,显示THP-1(40X)在(A)诱导前(B)诱导后的形态学变化。它们的形态由圆形变为细长和扁平。 巨噬细胞进一步诱导成M1型实验步骤: (1)诱导培养基的配置:向1640完全培养基(含胎牛血清)里加入PMA(诱导浓度:100ng/mL)、脂多糖(LPS)(诱导浓度:100ng/mL)(abs47014848)、IFN-γ(诱导浓度:20...
THP-1细胞通常用佛波酯(PMA)(abs9107)诱导分化为巨噬细胞,然后在PMA仍然存在的情况下: 加入脂多糖(LPS)(诱导浓度:100ng/mL)(abs47014848)、IFN-γ(诱导浓度:20ng/mL)(abs04123)培养48h,诱导其向M1极化; 加入IL-4(诱导浓度:20ng/mL)(abs04698)、IL-13(诱导浓度:20ng/mL)(abs04079)培养48h,诱导其向...
1.4 细胞鉴定：通过qRT-PCR、ELISA、流式细胞术等方法进行鉴定。（M1标记物如：CD80, iNOS, IL-1β...
细胞分化效率评估:在PMA诱导下,THP-1细胞成功分化为巨噬细胞。通过流式细胞术分析,我们发现分化后的细胞表达了高水平的CD14和CD68,这是巨噬细胞表面的典型标记物。与未分化的THP-1细胞相比,分化后的细胞CD14阳性率从2%提升至6%,CD68阳性率从3%提升至9%,显示出显著的分化效率。 表型特征分析:分化后的巨噬细胞不仅...
加入IL-4(诱导浓度:20ng/mL)(abs04698)、IL-13(诱导浓度:20ng/mL)(abs04079)培养48h,诱导其向M2极化; 最后,在无刺激物和无PMA的情况下,用无血清RPMI-1640基础培养基重悬细胞,可保持72h。 诱导步骤 THP-1诱导分化成巨噬细胞实验步骤: (1)THP-1细胞的培养:更多培养技巧可查看THP-1细胞培养攻略 ...
目的:用流式细胞术明确单独使用PMA诱导THP-1细胞分化而来的巨噬细胞的分化情况。 方法:首先用PMA刺激THP-1细胞分化为巨噬细胞,再分别使用LPS、IFN-γ和IL-6将细胞诱导为M1型巨噬细胞,用IL-4、IL-13和IL-6将细胞诱导为M2型巨噬细胞。显微镜下观察三种细胞的形态学改变,并用流式细胞术检测各细胞主要CD分子表达...
THP-1细胞的极化及鉴定过程如下：将细胞用RPMI 1640完全培养基重悬，加入终浓度为100ng/ml的PMA进行24h诱导分化。随后，将细胞分为两组进行极化：一组加入10ng/ml的LPS和20ng/ml的人类IFN-γ，另一组加入20ng/ml的人类IL-4和20ng/ml的人类IL-13。通过qRT-PCR、ELISA、流式细胞术等方法对细胞...
巨噬细胞进一步诱导成M1型实验步骤: (1)诱导培养基的配置:向1640wan全培养基(含胎牛血清)里加入PMA(诱导浓度:100ng/mL)、脂多糖(LPS)(诱导浓度:100ng/mL)(abs47014848)、IFN-γ(诱导浓度:20ng/mL)(abs04123),制成诱导培养基; (2)诱导培养:将已经诱导成的巨噬细胞上清弃除,加入诱导培养基(6孔板,每孔...
方法首先用PMA刺激THP-1细胞分化为巨噬细胞,再分别使用LPS、IFN-γ和IL-6将细胞诱导为M1型巨噬细胞,用IL-4、IL-13和IL-6将细胞诱导为M2型巨噬细胞。显微镜下观察三种细胞的形态学改变,并用流式细胞术检测各细胞主要CD分子表达的差异。结果当THP-1分化为巨噬细胞后变为贴壁生长,细胞形态呈较规则的圆形或椭圆...