凝胶浓度不正确：如果凝胶浓度太高，蛋白标准品可能无法移动。建议尝试不同的凝胶浓度，以找到最适合的凝...
参考marker,marker如果也出现拖尾等现象,是否你的胶放置太久(自己配置的超过1周,且保存不当),配胶步骤是否出了问题。 解决办法:换一块新配置的胶试一试。 3)原因三:电压、电泳液、电极芯等问题 条带轻度拖尾、弥散现象,考虑电压、电泳液、电极芯等问题。参考marker,marker如果没问题,只有样本条带有问题,考虑跑胶...
1. 电泳条件不适当: 电泳条件包括电压、电流、时间等,如果这些条件设置不合适,可能会导致蛋白质标记跑不开。例如,电压过低可能会导致蛋白质运动速度过慢,而电压过高可能会导致蛋白质降解或电泳胶过热。 2. 样品处理不当: 在进行SDS-PAGE电泳前,需要对样品进行适当的处理,如加热、加入SDS等。如果这些步骤操作不当,...
如果希望分子量大小不同的成分都能有效分离,可以考虑使用梯度胶,因为普通的胶可能由于其浓度不当而无法实现这一目标。
A、B、C、D：SDS-PAGE凝胶浓度分别为8%、10%、12%、15%；从左至右彩色预染蛋白Marker的上样量...
这是因为缓冲液和分离胶的浓度过高,溴酚蓝没有起到指示的作用了。 相关服务: SDS-PAGE蛋白质纯度分析 提交需求 姓名* 联系类型 * 请选择手机电子邮箱qq微信 联系方式 * 项目描述 咨询项目 * 提交需求 How to order?
样品沉淀了？多煮会儿吧，再离心一下，取样避开沉淀
在蛋白纯化过程中，SDS-PAGE跑胶的问题对新手来说无疑是一个挑战。我亲身体验过这个“难题”，耗时半学期才逐渐掌握。问题的复杂性主要源于信息的缺乏和自身理解的不足。遇到样本挂孔、条带拖尾和弥散的情况，通常可以从以下几个方面寻找原因：首先，上样浓度问题不容忽视。过高的样本浓度可能导致挂孔，...
上样缓冲液混合后进行变性，温度必须要超过95°，时间5—10min，如果没把握，可以处理10min。也有可能是漏胶，制胶时封胶要严，操作不熟练时可以多加一点，待聚合后用去离子水加入电泳槽内，看看是否会漏，如果不会把水倒掉，滤纸吸干后再加入凝胶。加样的问题，加样时注意不要刺破凝胶，以避免样品...