融合蛋白是通过融合编码两个或更多蛋白质的基因而不影响药代动力学产生的,是延长大多数蛋白质药物半衰期和延迟降解的另一种策略,如Fc融合蛋白。在CHO-K1SV GS-KO细胞中构建了包含人类VEGF受体1的细胞外域1、2和3的VEGFR1(D1-D3)-Fc融合蛋白,并与IgG1...
后来Lonza生物公司将ECACCCHO-K1通过多年改造训化，建立CHO K1SV（Lonza，2002）细胞株使其适应无血清培养基悬浮培养，被广泛应用在GS表达平台。Merck公司在2006年通过ECACC获得CHO-K1细胞株，并进行悬浮驯化建立了CHOZN CHO K1（Merck，2006）细胞株，该细胞株可以生长在化学成分限定培养基中，降低了培养成本。基于CHO...
CHO K1 SV(Lonza) 同Merck类似,Lonza从 ECACC获得CHO-K1驯化到悬浮无血清培养后,建立CHO K1SV(Lonza,2002)细胞株。 CHOK1SV GS-KO(Lonza) Lonza在其CHOK1SV细胞的基础上,与Cellectis公司 合作并利用后者的Meganucleases技术将CHOK1SV细胞中GS的双等位基因完全敲除,于2012年推出了CHOK1SV GS-KO细胞株。根据资...
CHO细胞种类多样,包括CHO-K1、CHO-S、CH-DG44、CHOZN-GS、CHO-K1SV、CHO-K1SV GS-KO、CHO-K1 GS等。不同的CHO宿主细胞在细胞株构建中的表现各异,可以采购商品化的宿主细胞试剂盒,并遵照说明书进行操作,待熟悉细胞特性后再优化筛选方式和策略。各种CHO宿主细胞均有各自优劣,使用者需考虑表达水平、蛋白质量、...
Lonza公司从ECACC获得CHO-K1驯化到悬浮无血清培养后,建立CHO K1SV(Lonza,2002)细胞株,并广泛应用于其GS表达平台。 Merck(原SAFC)也是从ECACC获得CHO-K1细胞株,并悬浮驯化至化学成分限定培养基中,形成了CHOZN® CHO K1(Merck,2006)细胞株。 基于CHO-K1细胞的表达平台多采用GS(谷氨酰胺合成酶)筛选系统和/或抗生...
经过60年的发展,CHO细胞系出现了多种成熟的商业化产品,主要包括CHO K1、CHO/dhfr-、CHO-S。CHO K1基于GS体系(谷氨酰胺合成酶),在CHO K1基础上敲除GS基因得到新一代的CHO K1 GS-/-细胞系。龙沙的CHO K1SV即为一代CHO K1细胞系,龙沙的CHO K1SV GS-KO和西格玛-奥德里奇的CHOZN GS-/-即为新一代CHO K1...
经过60年的发展,CHO细胞系出现了多种成熟的商业化产品,主要包括CHO K1、CHO/dhfr-、CHO-S。CHO K1基于GS体系(谷氨酰胺合成酶),在CHO K1基础上敲除GS基因得到新一代的CHO K1 GS-/-细胞系。龙沙的CHO K1SV即为一代CHO K1细胞系,龙沙的CHO K1SV GS-KO和西格玛-奥德里奇的CHOZN GS-/-即为新一代CHO K1...
Lonza公司从ECACC获得CHO-K1驯化到悬浮无血清培养后,建立CHO K1SV(Lonza,2002)细胞株,并广泛应用于其GS表达平台。 Merck(原SAFC)也是从ECACC获得CHO-K1细胞株,并悬浮驯化至化学成分限定培养基中,形成了CHOZN® CHO K1(Merck,2006)细胞株。 基于CHO-K1细胞的表达平台多采用GS(谷氨酰胺合成酶)筛选系统和/或抗生...
最原始的CHO-K1细胞是贴壁细胞,并且需要添加血清培养;2002年Lonza将其移至悬浮无血清培养,建立CHO-KISV细胞;2006年Merck将其驯化至化学成分限定的培养基中培养,形成CHOZNCHO-K1细胞;2012年Lonza建立CHOKISVGS-KO细胞株,提高了筛选效率并缩短了稳定细胞株的培养周期,同时还提高了细胞的克隆稳定性。
√CHOK1SV GS-KO2012年Lonza在CHO K1S V细胞的基础上,将细胞中GS的双等位基因完全敲除,得到CHOK1SV GS-KO细胞株。 √CHO-S1973年Thompson从原始细胞中分离了一株可用于悬浮培养的CHO细胞(CHO S),1980年Gibco将此细胞驯化至CD CHO培养基中,建立CHO-S。