一般情况下,CCK-8 的 OD 值范围为 0.5-2.0,表示细胞数量在 10^3-10^6 个/ml 之间。但在实际应用中,不同细胞类型的 OD 值范围可能会有所不同。例如,常见的癌细胞系(如 HeLa、A549 等)的 OD 值范围通常在 1.0-1.5 之间,而正常细胞(如 HEK293)的 OD 值范围则在0.6-1.2 之间。 在实际应用中,选择...
Q:CCK-8 检测依赖于脱氢酶催化的反应,所以还原剂会干扰检测,那我该如何确定我的待测溶液是否有还原性呢? A:将不含细胞的待测溶液孔中加入 10 μL CCK-8 溶液,孵育 1-4 h 后,测定在 450 nm 处的空白吸光度。若测得的吸光度很小,则说明含有较少的还原剂,正式实验可以直接加入 CCK-8 进行检测;若测得...
OD值越大说明微生物越多。这个针对不同的菌种和不同的培养基均不同,需要自己前期做一个标准曲线。也就是用培养基为空白对照,不同生长阶段发酵液为样品测定OD值,并测定这些阶段的活菌数,此后再按照发酵时间对比标准曲线得出单位活菌数。但是活菌的生长不完全稳定性和细菌的自然沉降都会影响实验结果,如果看趋势可以使...
二、药物作用时间不足或铺板细胞密度太大 其次,药物作用时间不足或铺板细胞密度太大也可能导致测量不准确,都可能影响到细胞的生长状态和最终测得的OD值。 三、误差 操作过程中的误差也是导致OD值不准确的一个原因。例如,加入CCK-8之前,如果在更换培养基时不小心吸走了活细胞,或者操作不当导致细胞状态改变,都可能...
细胞增殖的检测方法众多，CCK-8是细胞增殖检测中的代谢活性检测，属于MTT的升级产品，操作较MTT更便捷（不需要DMSO溶解）。工作原理：CCK-8可以被细胞线粒体内的脱氢酶还原生成高度水溶性的橙黄色的甲臜产物。颜色的深浅与细胞的增殖成正比，与细胞毒性成反比。使用酶标仪在450nm波长处测定OD值，间接反映活细胞数量。实...
A3:a.可以缩短加入CCK-8后的培养时间。 b. 适当减少细胞的数量。 Q4:在实验中OD值太低,怎么解决? A4:a.适当增加细胞数量。 b.延长加入CCK-8溶液后的孵育时间。 Q5:培养基的本底颜色如酚红会不会影响细胞活性的检测呢? A5:不会,培养基中酚红的吸光度可以在计算时,通过扣除空白孔中本底的吸光值而消去,因此...
因为每块板都会设置对照孔,也就是含有细胞的培养基+CCK8,这个数值是板上的最大数值,CCK8试验最佳OD值在1.0附近,所以这个最大数值最好能控制在1.0左右。我的实验经验是不要让细胞长满,一旦长满了很难去判断是否堆积生长了,对药物能否顺利进入细胞有影响此为其一,其二生长不均匀易导致孔间OD值数据偏差大,而且OD值...
在实际应用中,CCK8的OD值范围还可以用于评估药物的毒性和抑制效果。通过将药物作用于细胞,然后测量细胞的OD值范围,可以判断药物对细胞的生存能力和增殖状态的影响。一般来说,药物的毒性和抑制效果与细胞的OD值范围呈负相关关系,即药物的毒性越大,细胞的OD值范围越低。因此,通过测量细胞的OD值范围,可以评估药物的毒性和...
CCK-8细胞存活率计算公式如下: 存活率(%)=(实验组OD值-空白对照组OD值)/(对照组OD值-空白对照组OD值)×100% 其中,OD值指的是光密度值,实验组OD值为处理后细胞的吸光度值,对照组OD值为未处理细胞的吸光度值,空白对照组OD值为培养基的吸光度值。 具体操作步骤如下: 1.将细胞均匀分布于96孔板中,每孔加入100μ...