A液20/3mL,B液2.5mL蒸馏水(7.5-20/3)mL,10%过硫酸铵50uL,TEMED5uL.结果一 题目 如何配制20%的SDS-PAGE分离胶? 答案 A液20/3mL,B液2.5mL蒸馏水(7.5-20/3)mL,10%过硫酸铵50uL,TEMED5uL.相关推荐 1如何配制20%的SDS-PAGE分离胶?反馈 收藏 ...
10%的分离胶：蒸馏水40.5ml；1.5Mtris 25ml（pH8.8）；10%SDS 1ml；acr/bis 33.25ml 20%的分离胶按此比例加倍即可。如果是小分子蛋白分离，建议最好用专门走小分子蛋白的胶（例如Tricine-SDS-PAGE等）
20%的分离胶按此比例加倍即可。 如果是小分子蛋白分离,建议最好用专门走小分子蛋白的胶(例如Tricine-SDS-PAGE等) 00分享举报您可能感兴趣的内容广告 SDS,试剂—金克隆(北京)生物技术有限公司 SDS属阴离子型表面活性剂,广泛应用于化妆品和生化研究领域,在洗衣粉、牙膏等的制作中,可作为起泡剂和去污剂使用,金克隆...
A液20/3mL,B液2.5mL蒸馏水（7.5-20/3）mL,10%过硫酸铵50uL,TEMED5uL.
0.1的ap， 0.1的sds，0.01的temed，水和丙烯酰胺的总体积大约加7.5，可以自己调节，最多加7.5的丙烯酰胺不加水，也就是说最多配出30%的胶来。ap和temed随气温调整，你要配大于20%的，少加点。不过10k可以用15%PAGE胶跑，1-10k一般都用Tricine-SDS-PAGE胶跑，配30%分离胶意义不大。
A液20/3mL,B液2.5mL蒸馏水（7.5-20/3）mL,10%过硫酸铵50uL,TEMED5uL.
附电泳缓冲液组分浓度和配方 1)变性蛋白电泳缓冲液各组分浓度:50 mM Tris, 50 mM HEPES, 0.1% SDS, 2 mM EDTA 附不同浓度预制胶推荐分离蛋白范围参考表 相关产品 HB190730
15%的胶应该是没问题的，跑的时间长一些，距离长一些就能跑开。上样量得看你蛋白的表达量，一般15-30μg就应该没有问题，不过选用β-actin做对照，建议用另一块12%的胶跑β-actin，这样可以使目的蛋白和对照条带宽度大概一致。
答案 你可以用12%的胶浓度,如果marker是fermentas家的SDS非预染marker(批号SM0431)的话,可以看到116kd 66.2kd 45kd 35kd 25kd 18.4kd 14.4kd,这样你的目的条带20kd就差不多在整块胶的中间相关推荐 1【请问】怎样根据蛋白质大小确定SDS-PAGE电泳分离胶的浓度?比如我的蛋白20几个kD,分离胶的浓度需要多大?反馈...