解答一 举报 也可以用,就是浓度略低了点,推荐分离胶的浓度一般是按照要分离的蛋白的分子量范围决定的,10-80kDa的建议14%20-150kDa的建议12%30-200kDa的建议10%根据这样的推荐来看,30是分离下限了,所以这个分离胶的浓度略低,可以试试12%或者15%的. 解析看不懂?免费查看同类题视频解析查看解答 ...
不同分离胶的配方见图二,不同分离胶的根据所跑目的蛋白分子量进行选择,主要如下:6%分离胶,适用75-200kDa8%分离胶,适用50-150kDa10%分离胶,适用23-120kDa12%分离胶,适用18-100kDa15%分离胶,适用10-40kDa祝大家科研,多发paper!#科研#研究生日常 #研究生 #每天学习一点点 #技术分享 9.还原型5X SDS上样...
3.本试剂盒可配制40块常规大小(1mm)的10% SDS-PAGE分离胶,适用于分子量大小为20-80kD的蛋白样品。 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。 成份 包装 保存温度 10%下层分离胶A液
4.凝胶浓度:10%分离胶的凝胶浓度为10%,适合分离相对分子量较大的蛋白质。 5.电场强度:电场强度越高,电泳速率越快,但过高的电场强度可能导致凝胶溶化和电泳条带变形。 转膜条件: 1.转膜方法:常用的转膜方法包括湿转法和半干转法。湿转法操作简单,转移效率高,但需要使用昂贵的硝酸纤维素膜;半干转法适用于大胶...
我的蛋白分子量150-160kd的,我应该用多少的分离胶呀?我查的最佳是6%,能用10%的么?这二者有什么区别优 答案 胶浓度与蛋白大小,是经过前人多次电泳的经验总结.在最佳的电泳条件下,能得到比较好的分离效果和比较好看的条带.如果胶浓度够大,蛋白条带会比较细一些,但电泳速度比较慢,大的片段可能分不开.10%能不...
10%胶 －－－20-80 12%胶 －－－10－40 （2）分离胶浓度（％） －－－ 线性分离范围（KD)15 －－－ －－－ －－12-43 10 －－－ －－－16-68 7.5 －－－36-94 5.0 －－－ －－－ －57-212
浓度越高，胶孔径越小，可分离的蛋白分子量越小，具体看你目的蛋白分子量。
1 根据目的蛋白的分子量大小选择合适的凝胶浓度【参考附表1】 2 制胶流程(以一块0.75/ 1.0/ 1.5 mm的胶为例) 1)取等体积分离胶缓冲液和分离胶溶液混匀,即取两种溶液各2.0/ 2.7/ 4.0 mL。 2)往步骤1中的混合溶液中加入40/ 55/ 80μL的改良型过硫酸铵溶液(凝固太快可减半过硫酸铵使用量),充分混匀。
非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native PAGE)是目前电泳法分离活性蛋白的主要方法之一,跟SDS-PAGE根据分子量大小分离蛋白质不同,它是根据蛋白质分子大小、形状、电荷密度三个主要参数分离蛋白质。由于蛋白质的pI各不相同,所以对不同蛋白质需要选用具有不同pH的电泳体系。单独配制不同pH的Native PAGE电泳胶十分繁琐,为此本公...