琼脂糖浓度越高,胶越硬,跑的越慢 50×TAE Buffer 配制方法: 1) 称量Tris 242 g,Na2EDTA·2H2O 37.2 g于1 L烧杯中; 2) 向烧杯中加入约600 ml去离子水,充分搅拌溶解; 3) 加入57.1 ml的冰乙酸,充分搅拌; 4) 加去离子水定容至1 L后,室温保存。 使用时稀释50倍或100倍 即1×TAE Buffer 或 0.5×TA...
制作1%的琼脂糖凝胶,吸取提取的DNA溶液 5 μL,电泳检测,具体方法见实验47。用λDNA做分子量大小的Marker,如果带型不弥散,在与Marker 20 kb的带的相应位置出现整齐明亮的条带,说明基因组DNA完整,没有降解。
电泳缓冲液的配制和琼脂糖凝胶的配制: 1. 2%浓度的琼脂糖凝胶配制: 称取2g琼脂糖于锥形瓶中;并加入98mL蒸馏水,再加入2mL的50×TAE缓冲液(工作液浓度为1×),用微波炉或电炉加热使其完全溶解(沸腾一段时间)。待胶的温度降到70-80摄氏度的时候,加入10μL的10000×Gel Red染色剂,并摇晃混匀。室温中冷却至不...
在琼脂糖凝胶电泳中,1%的琼脂糖凝胶配置是:___克琼脂糖溶于100ml缓冲液中()A.5B.3C.2D.1
1、 用蒸馏水将电泳槽和梳子冲洗干净.放在水平桌面上,并架好梳子。 2、 取5×TBE缓冲液20ml加水至200ml,配制成0.5×TBE稀释缓冲液,待用。 3、 胶液的制备:称取0.4g琼脂糖,置于200ml锥形瓶中,加入50ml 0.5×TBE稀释缓冲液,放入微波炉里(或电炉上)加热至琼脂糖全部熔化,取出摇匀,此为0.8%琼脂糖凝胶液。加...
具体见表格:琼脂糖凝胶/% m/V 分离线性DNA片段的范围/kb 0.3 5060 0.6 120 0.7 0.810 0.9 0.57.0 0.4——6.0 0.33.0 0.12.0 琼脂糖凝胶电泳常用的缓冲液: 缓冲液 pH 1.50mmol/L Tris-NaH 2PQ-1--5mmol/L EDTA 7.58.0 2.50mmol/L NaHPQ Na 2HPQ1--5mmol/L EDTA 7.58.0 3.50mmol/L Tris-...
决定凝胶中琼脂糖的百分含量；一般情况下，可参考下表：琼脂糖的含量（%） 分离线状DNA分子的有效范围（Kb）0.3 60-5 0.6 20-1 0.7 10-0.8 0.9 7-0.5 1.2 6-0.4 1.5 4-0.2 2.0 3-0.1 琼脂糖凝胶的浓度一般从0.5%到~2都可以，1%最常用，这里单位是g/100mL。
琼脂糖凝胶电泳是基因工程试验室中分别鉴定核酸的常规方法。核酸是两性电解质,其等 电点 为pH2-2.5,在常规的电泳缓冲液中(pH约8.5),核酸分子带负电荷,在电场中向正极移动。 核酸分子在琼脂糖凝胶中泳动时,具有电荷效应和分子筛效应,但主要为分子筛效应。因此,核酸分子的迁移率由下列几种因素打算: (1)DNA的分子...
如下图,请问这个琼脂糖凝胶电泳结果怎么分析中间是maker,左边三条是样品1,从外到内依次是5µl,10µl,15µlDNA再加上2µlLoading Buffer.1.请问这个琼脂糖凝胶电泳结果怎么分析?2.DNA的量的多少对结果有什么影响吗?为什么要取5µl,10µl,15µlDNA?PS:因为是在没有学过生物化学的前提下去做了...