油红O染色:将切片放入油红O染液中,染色5~15分钟。染色过程中应轻轻摇动切片,使染料均匀分布。 染色结束后,使用洗涤液(如70%乙醇溶液)洗去多余染液,再用流水冲洗30秒。 苏木素复染:将切片放入苏木素染液中,复染2分钟。复染时间不宜过长,以免细胞核着色过深。 复染结束后,使用流水冲洗切片,以去除多余染液。 ...
油红染色实验步骤 (1)先小心轻缓倒去培养夜。 (2)用pbs轻缓漂洗(不洗没问题)。 (3)加10%中性甲醛固定30min(实际固准时间留宿都没问题。固定液用95%酒精也可)。 固定的是细胞膜。 (4)稀释油红储藏液,油红:去离子水=3:2,滤纸过滤,室温放置10min(除掉一些杂质,染色结果更清晰) (5)染色10min左右,加...
二、实验步骤 冰冻切片:将组织或细胞切片至6-10μm厚度,用蒸馏水稍洗。 异丙醇漂洗:将固定好的切片或细胞放入60%异丙醇中漂洗20-30秒。 油红O染色:取6ml油红O储备液,加4ml蒸馏水,混合后静置10分钟。染色时间为5-10分钟。 异丙醇清洗:用60%异丙醇稍洗去多余染液,再用蒸馏水洗。 苏木素复染:用Mayer苏木...
以下是大体上进行油红O染色的一般步骤: 1.取材与固定: 取得新鲜或固定的组织样本,如果样本为新鲜组织,可以选择冷冻保存或固定在10%福尔马林等固定液中,固定时间通常为数小时至过夜。 2.组织处理: 对于冷冻组织,需先进行冰冻切片,厚度通常为6~10μm。 对于固定组织,切片后可选择不做脱蜡或进行脱蜡处理,取决于...
3️⃣ 染色过程: 加入适量染色洗涤剂覆盖细胞20秒(六孔板为1ml)。 吸除洗涤液,加入适量的油红O工作液染色10-20分钟。 吸除工作液,加入适量洗涤剂,静置30秒。 吸除洗涤剂,用PBS清洗20秒。 加入适量PBS均匀覆盖细胞,在显微镜下观察。通过以上步骤,您可以使用油红O染色法成功检测细胞内的脂肪含量。
图1. 油红O染色 Oil Red O Stain 染色步骤 注意:染色开始前将油红O溶液水浴加热到60°C。 1. 准备冰冻或石蜡组织切片。 2. 将切片置于丙二醇中室温孵育5分钟。 3. 将切片在60℃油红O溶液中孵育6-10分钟或在室温下孵育过夜。 注意:用蒸馏水将丙二醇稀释...
🔍 油红O脂肪染色是一种常用的染色方法,用于显示脂肪组织的分布和形态。以下是详细的步骤:1️⃣ 首先,取脱脂石蜡包埋的组织切片,将其置于70%乙醇中进行脱脂处理,时间根据组织大小而定。2️⃣ 接着,将切片转移到蒸馏水中漂洗几秒钟,以去除乙醇。3️⃣ 然后,将切片浸泡在0.5-1%的油红O溶液中,时间为...
油红O染色:油红O染色是一种用于检测细胞或组织内中性脂质的染色方法,利用油红O这种脂溶性偶氮染料,能特异性地使脂滴或甘油三脂等染成红色或橙红色。实验仪器和材料冰冻切片机载玻片及盖玻片显微镜、成像系统OCT包埋剂油红苏木素实验步骤1、冰冻切片固定:将冰冻切片放入4%多聚甲醛固定...
实验步骤 1、取材固定:将目的区域的血管分离取下,用镊子尽可能地去除血管周围的脂肪组织,将血管置于固定液固定24h以上,将组织从固定液中取出,PBS浸洗两次; 2、剖开:用解剖剪沿血管壁小心地将血管纵向剖开。 3、染色:将剖开的血管浸入油红染液中37°染色60min后取出,用60%异丙醇分化至管腔内脂肪斑块呈橘红色或鲜...